Postmortale klinische Labordiagnostik beim Rind – ein Zusatzinstrument für die Veterinärpathologie

Zusammenfassung

Bei der Sektion kann der postmortale (p. m.) Einsatz klinisch-labordiagnostischer Untersuchungen aus Probenmaterial mehr oder weniger geschützter Kompartimente wichtige Zusatzinformationen für die Diagnose und Differenzialdiagnose liefern bzw. eigentlich nur klinisch zu stellende Diagnosen ohne pathomorphologisches Korrelat überhaupt erst ermöglichen. Die Arbeit liefert Anregungen zu diagnostischen Verfahren unter Verwendung von Augenkammerwasser, Harn, Pansensaft und weiteren p. m. erst zeitlich verzögert durch Auto- und Heterolyse beeinträchtigten Proben. Es wird eine Übersicht zu p. m. verwendbaren Probenmaterialien und deren Entnahme speziell beim verendeten Rind, zu klinisch-labordiagnostischen Parametern und Methoden und ihrer Aussagekraft sowie zu präanalytisch relevanten Vorbehalten bei der Befundinterpretation gegeben. Aus der Literatur und aus langjähriger Erfahrung mit p. m. klinischer Labordiagnostik werden praktikable Ansätze für die tägliche Arbeit und für spezielle Fragestellungen abgeleitet. Insbesondere Augenkammerwasser, Pansensaft und ggf. Harn sind leicht zugängliche Matrizes. Auch Liquor cerebrospinalis lässt sich in guter Qualität gewinnen und z. B. auf Elektrolyte und Metaboliten analysieren. Postmortale klinische Labordiagnostik kann in speziellen Fällen, z. B. Festliegen und Verenden infolge von Hypokalzämie oder Hypomagnesämie, Hinweise auf die Todesursache geben, auch wenn aufgrund eines zu raschen Versterbens keine labormedizinischen Untersuchungen zu Lebzeiten durchgeführt werden konnten oder p. m. keine morphologischen Veränderungen feststellbar waren, die das klinische Bild erklären würden. Die p. m. Labordiagnostik ist auch hilfreich, wenn sich am lebenden Tier keine klinischen Befunde erheben ließen. Zwar ergeben sich bei der Sektion auch sensorisch Hinweise auf Urämie und Ketose, doch erlauben klinisch-chemische Untersuchungen eine Verifizierung. Klinisch-labordiagnostische Untersuchungen können die Diagnose erhärten oder die Differenzialdiagnose eingrenzen bzw. sogar erst ermöglichen. Die Zusammenstellung erhebt keinen Anspruch auf Vollständigkeit, kann aber in der Pathologie Tätige zu solchen relativ selten eingesetzten Zusatzuntersuchungen ermutigen und die Zusammenarbeit zwischen Veterinärpathologen und klinischen Labordiagnostikern anregen.

Abstract

Clinical-pathologic examination of samples collected from more or less preserved body compartments during necropsy may provide important information and contribute to the list of differential diagnoses without corresponding patho-morphologic findings. It furthermore allows for diagnoses that otherwise may only be achieved clinically. Our review presents diagnostic approaches in examining aqueous humor, urine, ruminal fluid as well as other sample types characterized by a delayed onset of auto- and heterolytic artefacts. An overview is provided concerning post mortem (p. m.) sample types and collection methods with a special focus on cattle. Furthermore, clinical-pathologic methods and parameters are presented and their validity discussed. A summary of pre-analytical caveats relevant for the final interpretation of findings is made available. Based on long-term experience in p. m. clinical pathology as well as literature information we provide practical approaches for daily routine diagnostics as well as for specific case scenarios. Especially aqueous humor, ruminal fluid, and urine are easily accessible sample types. The collection of high-quality cerebrospinal fluid allows for electrolyte and metabolite analyses. Post-mortem clinical pathology may provide an indication concerning the cause of death in specific cases e. g., recumbency and death due to hypocalcemia or hypomagnesemia. This is especially relevant in cases in which ante mortem clinical pathology investigations are hindered by rapid death of the animal as well as in cases in which the gross pathology findings cannot explain the clinical findings. Post-mortem clinical pathology may also be helpful when a clinical examination of the diseased animal is hampered. During necropsy for example uremia and ketosis may be detected based on their characteristic smell; however, the use of clinical chemical analyses allows the verification by an assessment of the metabolites in these cases. Post-mortem clinical pathology may hence help in establishing a diagnosis, narrow down the list of differentials or even reveal relevant differential diagnoses for the first time during the diagnostic process. Our review does not claim to be exhaustive; however, it serves to encourage the pathologist to make use of the so far rarely employed ancillary analyses as well as to promote the collaboration between veterinary and clinical pathologists.

Schlüsselwörter

Todesursache - Pathologie - Augenkammerwasser - Harn - Pansensaft

Key words

Cause of death - pathology - aqueous humor - urine - ruminal fluid

Publication History

Received: 25 February 2021

Accepted: 15 July 2021

Article published online:
03 December 2021

• Literatur

• 1 Myers RK, McGavin MD. Irreversible Zellschädigung und Zelltod: Morphologie postmortaler Veränderungen. In: McGavin MD, und Zachary JF. Hrsg. Pathologie der Haustiere. 1. Aufl.. München: Elsevier; 2009: 25-27
• 2 Carrier J, Stewart S, Godden S. et al. Evaluation and Use of Three Cowside Tests for Detection of Subclinical Ketosis in Early Postpartum Cows. J Dairy Sci 2004; 87: 3725-3735
• 3 Munoz Barus JI, Febrero-Bande M, Cadarso-Suarez C. Flexible regression models for estimating postmortem interval (PMI) in forensic medicine. Statist Med 2008; 27: 5026-5038
• 4 Launer P, Drechsler H. Beitrag zur postmortalen toxikologisch-chemischen Diagnostik der akuten Pansenazidose. Mh Vet Med 1977; 32: 571-576
• 5 Fischer A, Tipold A. Liquor cerebrospinalis. In: Moritz A. Hrsg. Klinische Labordiagnostik in der Tiermedizin. 7. Aufl.. Stuttgart: Schattauer; 2014: 537-548
• 6 Keyzer JJ, Oosting E, Eolthers BG. et al. Zinc in plasma and serum: influence of contamination due to the collection tubes. Pharm Weekbl Sci Ed 1983; 5: 248-251
• 7 Schulz LC. Hrsg. Bestimmungen an Körperflüssigkeiten. In: Pathologie der Haustiere, Teil II: Krankheiten und Syndrome. 1. Aufl.. Jena: Fischer; 1991: 278
• 8 Hanna PH, Bellamy EC, Donald A. Postmortem Eyefluid Analysis in Dogs, Cats and Cattle as an Estimate of Antemortem Serum Chemistry Profiles. Can J Vet Res 1990; 54: 487-494
• 9 McLaughlin PS, McLaughlin BG. Chemical analysis of bovine and porcine vitreous humors: Correlation of normal values with serum chemical values and changes with time and temperature. Am J Vet Res 1987; 48 (03) 467-473
• 10 McLaughlin BG, McLaughlin PS. Equine Vitreous Humor Chemical Concentrations: Correlation with Serum Concentrations, and Postmortem Changes with Time and Temperature. Can J Vet Res 1988; 52: 476-480
• 11 Moritz A, Schwendenwein I, Kraft W. Harnapparat. In: Moritz A. Hrsg. Klinische Labordiagnostik in der Tiermedizin. 7. Aufl.. Stuttgart: Schattauer; 2014: 420-474
• 12 Cole NA, Richardson LF, Stock RA. Postmortem ruminal changes in sheep and steers. Vet Clin Nutr 1998; 5: 14-17
• 13 Thiemann KG, Rieger S, Schubert B. Zur chemisch-toxikologischen Labordiagnostik der akuten Pansenazidose (Kurzmitteilung). Mh Vet Med 1992; 47: 413-414
• 14 Szasz G. Gamma-Glutamyltranspeptidase. In: Bergmeyer HU. Hrsg. Methoden der enzymatischen Analyse. Weinheim: Chemie; 1974: 757
• 15 Blondheim SH, Margoliash E, Shafrir E. A Simple Test for Myohemoglobinuria (Myoglobinuria). J Am Med Assoc 1958; 167 (04) 453-454 DOI: 10.1001/jama.1958.72990210001009.
• 16 Kutas F. Determination of net acid-base excretion in the urine of cattle. A method for the estimation of acid-base equilibrium. Acta Vet Acad Sci Hung 1965; 15: 147-153
• 17 Amtliche Sammlung von Untersuchungsverfahren nach § 64 LFGB L 07.00–5/1:2010–01 Untersuchung von Lebensmitteln – Bestimmung des Kochsalzgehaltes (Natriumchlorid) in Fleischerzeugnissen – Potentiometrische Endpunktbestimmung.
• 18 Montgomery JF, Hum S. Field diagnosis of nitrite poisoning in cattle by testing aqueous humor samples with urine test strips. Vet Rec 1995; 137 (23) 593-594
• 19 Wilcock BP. Auge, Augenlider, Konjunktiven und Augenhöhle: Anatomische und funktionelle Grundlagen. In: McGavin MD, Zachary JF. Hrsg. Pathologie der Haustiere. 1. Aufl.. München: Elsevier; 2009: 1214-1267
• 20 Goel M, Picciani RG, Lee RK. et al. Aqueous Humor Dynamics: A Review. Open Ophthalmol J 2010; 4: 52-59
• 21 Gerometta RM, Malgor LA, Vilalta E. et al. Cl-concentrations of bovine, porcine and ovine aqueous humor are higher than in plasma. Exp Eye Res 2005; 80 (03) 307-312
• 22 Kim CJ, Choi SK. Analysis of Aqueous Humor Calcium and Phosphate from Cataract Eyes with and without Diabetes Mellitus. Kor J Ophthalmol 2007; 21 (02) 90-94
• 23 Wolf P. Die Magnesiumgehaltsbestimmung im Glaskörper des Rinderauges – ein Beitrag zur postmortalen Tetaniediagnostik [Abschlussarbeit zum postgradualen Studium Fachtierarzt für Labordiagnostik]. Berlin: Humboldt-Universität; 1990
• 24 Schoon HA, Bösch B, Rosenbruch M. et al. Harnstoffbestimmung im Kammerwasser – eine Möglichkeit zur postmortalen Urämiediagnostik. Kleintierprax 1982; 27: 209-216
• 25 Wilkie IW, Bellamy JE. Estimation of antemortem serum electrolytes and urea concentrations from vitreous humor collected postmortem. Can J Comp Med 1982; 46 (02) 146-149
• 26 Lane VM, Lincoln SD. Changes in urea nitrogen and creatinine concentrations in the vitreous humor of cattle after death. Am J Vet Res 1985; 7: 1550-1552
• 27 Appleby EC, Hayward AHS, Stodulski G. et al. Urea levels in aqueous humour – an aid to diagnosis in the cat. Vet Rec 1990; 29: 619-620
• 28 Madel A. Untersuchungen zur Azotämie bei Heimtierkaninchen [Dissertation]. Berlin: Freie Universität Berlin; 2016
• 29 Cantor GH, Palmer GH, Fenwick BW. Analysis of post mortem aqueous humour chemistry in the horse, with particular reference to urea nitrogen and creatinine. Equine Vet J 1989; 21 (04) 288-291 DOI: 10.1111/j.2042-3306.1989.tb02170.x.. Erratum in: Equine Vet J 1989; 21 (5): 366
• 30 Varela RA, Bossart GD. Evaluation of biochemical analytes in vitreous humor collected after death in West Indian manatees. J Am Vet Med Assoc 2005; 226 (01) 88-92
• 31 McKenzie RA, Rayner AC, Thompson GK. et al. Nitrate-nitrite toxicity in cattle and sheep grazing Dactyloctenium radulans (button grass) in stockyards. Aust Vet J 2004; 82 (10) 630-634
• 32 Scott PR, Sargison ND, Penny CD. et al. Aqueous humour and cerebrospinal fluid collected at necropsy as indicators of ante mortem serum 3-OH butyrate concentration in pregnant sheep. Br Vet J 1995; 151: 459-461
• 33 Gaasterland DE, Pederson JE, McLellan HM. et al. Rhesus monkey aqueous humor composition and a primate ocular perfusate. Invest Ophthalmol Visual Sci 1979; 18: 1139-1150
• 34 McCoy MA, Hutchinson T, Davison G. et al. Postmortem biochemical markers of experimentally induced hypomagnesaemic tetany in cattle. Vet Rec 2001; 148 (09) 268-273
• 35 McCoy MA. Hypomagnesaemia and new data on vitreous humour magnesium concentration as a post-mortem marker in ruminants. Magnes Res 2004; 17 (02) 137-145
• 36 Fürll M. Ketose – und was nun?. Tagungsband zur AVA-Haupttagung Nutztierpraxis aktuell 2017; 176-180
• 37 Fürll M. Milchuntersuchung. In: Moritz A. Hrsg. Klinische Labordiagnostik in der Tiermedizin. 7. Aufl.. Stuttgart: Schattauer; 2014: 734-748
• 38 Hapke HJ. Toxikologie für Veterinärmediziner. 2. Aufl.. Stuttgart: Enke; 1988
• 39 Fuchs V, Knoll U. Chemisch-toxikologische und biologische Untersuchungen auf Gifte. In: Kühnert M. Hrsg. Veterinärmedizinische Toxikologie. 1. Aufl.. Jena: Fischer; 1991: 491-492
• 40 Fürll M. Pansensaftuntersuchung. In: Moritz A. Hrsg. Klinische Labordiagnostik in der Tiermedizin. 7. Aufl.. Stuttgart: Schattauer; 2014: 748-766
• 41 Thomas L. Enzyme. In: Labor & Diagnose. 2020 Im Internet: https://www.labor-und-diagnose-2020.de/k01.html (Stand: 18.02.2021)
• 42 Braun U, Eicher R, Bracher V. Inneres Erbrechen beim Rind – Untersuchungen über das abomasale Refluxsyndrom bei verschiedenen Erkrankungen des Verdauungsapparates. Schweiz Arch Tierheilk 1988; 130: 225-236