Laryngorhinootologie 2002; 81(3): 196-203
DOI: 10.1055/s-2002-25041
Otologie
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Der Einfluss von Chinin auf aktive Motilität und Feinstruktur isolierter äußerer Haarzellen der Meerschweinchenkochlea

The Effects of Quinine on Active Motile Responses and Fine Structure of Isolated Outer Hair Cells from the Guinea Pig CochleaR.  Dieler1 , C.  Davies1 , W. E.  Shehata-Dieler1
  • 1Bayerische Julius-Maximilians-Universität, Klinik und Poliklinik für Hals-, Nasen- und Ohrenkranke (Direktor: Univ.-Prof. Dr. med. J. Helms)
Herrn Professor Dr. Jan Helms zum 65. Geburtstag gewidmet.
Further Information

Publication History

10. Oktober 2001

30. Januar 2002

Publication Date:
12 April 2002 (online)

Zusammenfassung

Hintergrund: Therapeutische Dosen von Chinin (wie auch von Salicylaten) können eine reversible Hörminderung und Ohrgeräusche verursachen. Die Ergebnisse von Ableitungen unterschiedlicher akustisch evozierter Potenziale ließen darauf schließen, dass die kochleären äußeren Haarzellen den Hauptangriffsort für die ototoxischen Wirkungen dieser Substanz darstellen.

Methode: Isolierte äußere Haarzellen der Meerschweinchenkochlea wurden in primärer Zellkultur mit ototoxischen Konzentrationen von Chininhydrochlorid (50 µmol/l bis 1,5 mmol/l) umspült. Mit Patch-clamp-Techniken in Ganz-Zell-Konfiguration erfolgte die Stimulation der Haarzellen zur Analyse der Elektromotilität und der Membranpotenziale. Zur Darstellung der Feinstruktur nach Chininapplikation wurden isolierte Haarzellen fixiert und transmissionselektronenmikroskopisch untersucht.

Ergebnisse: Nach Chininexposition zeigten die äußeren Haarzellen eine initiale Hyperpolarisation des Membranpotenzials, gefolgt von einer Depolarisation. Meistens ließ sich eine Verminderung der Elektromotilität beobachten, die sich nach hyperpolarisierenden Spannungspulsen deutlicher ausprägte als nach Depolarisation. Diese Effekte waren nach Spülung mit chininfreier artifizieller Perilymphlösung reversibel. Licht- oder elektronenmikroskopisch waren keine strukturellen Veränderungen, die direkt auf Chinineinfluss zurückzuführen wären, darstellbar.

Schlussfolgerungen: Chinin führt zu einer direkten und reversiblen Veränderungen an den kochleären äußeren Haarzellen und damit direkt am kochleären Verstärkermechanismus. Im Gegensatz zu Salicylaten beeinflusst Chinin jedoch nicht den Turgor oder die Feinstruktur der äußeren Haarzellen. Trotz identischer ototoxischer Symptome von Chinin und Salicylaten scheint somit der Wirkmechanismus beider Substanzen grundlegend unterschiedlich zu sein.

Abstract

Background: Large doses of quinine (as well as of salicylate) are known to produce reversible hearing loss and tinnitus. Cochlear outer hair cells seem to be the common site for the ototoxic effect of both drugs.

Methods: Isolated outer hair cells from the guinea pig cochlea were exposed to ototoxic doses of quinine hydrochloride (0.05-1.5 mmol/l). The cells were examined using tight-seal whole-cell recording techniques and transmission electron microscopy.

Results: Quinine exposure led to a hyperpolarization followed by a depolarization of the hair cells’ membrane potential. It also caused a diminution of evoked rapid motile responses that was more apparent in response to hyperpolarizing than to depolarizing pulses. These effects were largely dose dependent and reversible. Ototoxic doses of quinine were not found to induce changes in turgor, shape or fine structure of outer hair cells such as those reported with ototoxic doses of salicylates in vitro.

Conclusions: The present in vitro findings show that quinine (as well as salicylate) directly and reversibly affects cochlear outer hair cells. They also indicate that the underlying mechanisms of quinine ototoxicity are considerably different to that of salicylate although both substances clinically lead to identical symptoms.

Literatur

  • 1 Tracy J W, Webster L T Jr. Drugs used in the chemotherapy of protozoal infections. In: Hardman JG, Limbird LE, Molinoff PB, Ruddon RW, Goodman Gilman A (Hrsg) Goodman & Gilman’s The Pharmacological Basis of Therapeutics. 9. Aufl. New York; McGraw-Hill 1996: 965-985
  • 2 Martindale W. The Extra Pharmacopoeia. 30. Aufl.  London; The Pharmaceutical Press 1993
  • 3 Koegel L. Ototoxicity: A contemporary review of aminoglycosides, loop diuretics, acetysalicyl acid, quinine, erythromycin and cisplatinum.  Am J Otol. 1985;  6 190-199
  • 4 Alván G, Karlsson K K, Villén T. Reversible hearing impairment related to quinine blood concentration in guinea pigs.  Life Sci. 1989;  45 751-755
  • 5 Alván G, Karlsson K K, Hellgren U, Villén T. Hearing impairment related to plasma quinine concentration in healthy volunteers.  Br J Clin Pharmacol. 1991;  31 409-412
  • 6 Jung T TK, Rhee C K, Lee C S, Park Y S, Choi D C. Ototoxicity of salicylate, nonsteroidal antiinflammatory drugs, and quinine.  Otolaryngol Clin North Am. 1993;  26 791-810
  • 7 Smith D I, Lawrence M, Hawkins J E Jr. Effects of noise and quinine on the vessels of the stria vascularis: an image analysis study.  Am J Otolaryngol. 1985;  6 280-289
  • 8 Puel J L, Bobbin R P, Fallon M. Salicylate, mefenamate, meclofenamate, and quinine on cochlear potentials.  Otolaryngol Head Neck Surg. 1990;  102 66-73
  • 9 Stypulkowski P H, Oriaku E T. A comparison of the ototoxic effects of salicylates and quinine. Abstracts of the Fourteenth Midwinter Research Meeting, Association for Research in Otolaryngology. 1991: 79
  • 10 Wang J, Li Q H, Dong W J, Chen J S. Effects of K+-channel blockers on cochlear potentials in the guinea pig.  Hear Res. 1993;  68 152-158
  • 11 Karlsson K K, Berninger E, Alván G. The effect of quinine on psychoacoustic tuning curves, stapedius reflexes and evoked otoacoustic emissions in healthy volunteers.  Scand Audiol. 1991;  20 83-90
  • 12 McFadden D, Pasanen E G. Otoacoustic emissions and quinine sulfate.  J Acoust Soc Am. 1994;  95 3460-3474
  • 13 Berninger E, Karlsson K K, Hellgren U, Eskilsson G. Magnitute changes in transient evoked otoacoustic emissions and high-level 2f1-f2 distortion products in man during quinine administration.  Scand Audiol. 1995;  24 27-32
  • 14 Zenner H P. Physiologische und biochemische Grundlagen des normalen und gestörten Gehörs. In: Naumann HH, Helms J, Herberhold C, Kastenbauer E (Hrsg) Oto-Rhino-Laryngologie in Klinik und Praxis. Bd. 1: Ohr. Stuttgart; Thieme 1994: 81-231
  • 15 Dieler R, Shehata-Dieler W E, Brownell W E. Concomitant salicylate-induced alterations of outer hair cell subsurface cisternae and electromotility.  J Neurocytol. 1991;  20 637-653
  • 16 Shehata W E, Brownell W E, Dieler R. Effects of salicylate on shape, electromotility and membrane characteristics of isolated outer hair cells from guinea pig cochlea.  Acta Otolaryngol (Stockh). 1991;  111 707-718
  • 17 Goldstein A H, Mizukoshi O. Separation of the organ of Corti in its component cells.  Ann Otol Rhinol Laryngol. 1967;  76 414-426
  • 18 Brownell W E. Microscopic observation of cochlear hair cell motility.  Scan Elec Micro. 1984;  III 1401-1406
  • 19 Brownell W E, Bader C R, Bertrand D, Ribaupierre Y. Evoked mechanical responses of isolated cochlear outer hair cells.  Science. 1985;  227 194-196
  • 20 Zenner H P, Zimmermann U, Schmitt U. Reversible contraction of isolated mammalian cochlear hair cells.  Hear Res. 1985;  18 127-133
  • 21 Evans B N. Fatal contractions: ultrastructural and electromechanical changes in outer hair cells following transmembraneous electrical stimulation.  Hear Res. 1990;  45 265-282
  • 22 Slepecky N B, Ligotti P J. Characterization of inner ear sensory hair cells after rapid-freezing and freeze-substitution.  J Neurocytol. 1992;  21 374-381
  • 23 Lim D J. Functional structure of the organ of Corti: a review.  Hear Res. 1986;  22 117-146
  • 24 Kalinec F, Holley M C, Iwasa K H, Lim D J, Kachar B. A membrane-based force generation mechanism in auditory sensory cells.  Proc Natl Acad Sci USA. 1992;  89 8671-8675
  • 25 Falbe-Hansen J. Clinical and experimental histological studies on effects of salicylate and quinine on the ear. Kopenhagen; Einar Munksgaard 1941
  • 26 Miller J J. Handbook of Ototoxicity. Boca Raton; CRC Press 1985
  • 27 Puel J L, Bledsoe S C, Bobbin R P, Caesar G, Fallon M. Comparative actions of salicylate on the amphibian lateral line and guinea pig cochlea.  Comp Biochem Physiol. 1989;  93C 73-80
  • 28 Stypulkowski P H. The mechanisms of salicylate ototoxicity.  Hear Res. 1990;  46 113-146
  • 29 Evans E F, Borerwe T A. Ototoxic effects of salicylates on the responses of single cochlear nerve fibers and of cochlear potentials.  Br J Audiol. 1982;  16 101-108
  • 30 Dyson E H, Proudfoot A T, Prescott L F, Heyworth R. Death and blindness due to overdose of quinine.  Br Med J (Clin Res Ed). 1985;  291 31-33
  • 31 Lee C S, Heinrich J, Jung T TK. Quinine-induced ototoxicity: alterations in cochlear blood flow.  Otolaryngol Head Neck Surg. 1992;  107 233
  • 32 Jastreboff M M, Gryczynski Z, Zhou S T, Jastreboff P J. Quinine levels in perilymph, CSF and serum in rats. Abstracts of the Sixteenth Midwinter Research Meeting, Association for Research in Otolaryngology. 1993: 144
  • 33 Karlsson K K, Flock Å. Quinine causes isolated outer hair cells to change length.  Neurosci Lett. 1990;  116 101-105
  • 34 Karlsson K K, Flock B, Flock Å. Ultrastructural changes in the outer hair cells of the guinea pig cochlea after exposure to quinine.  Acta Otolaryngol (Stockh). 1991;  111 500-505
  • 35 Jarboe J K, Hallworth R. The effect of quinine on outer hair cell shape, compliance and force.  Hear Res. 1999;  132 43-50
  • 36 Zheng J, Shen W, He D ZZ, Long K B, Madison L D, Dallos P. Prestin is the motor protein of cochlear outer hair cells.  Nature. 2000;  405 149-155

Priv.-Doz. Dr. med. Ralf Dieler

Bayerische Julius-Maximilians-Universität · Klinik und Poliklinik für Hals-, Nasen- und Ohrenkranke

Josef-Schneider-Str. 11 · 97080 Würzburg ·

Email: r.dieler@mail.uni-wuerzburg.de

    >